Weissella cibaria что это

В швейцарском сыре содержится мощный пробиотик, способствующий долголетию

Бактерия Propionibacterium freudenreichii, которая используется при ферментации Эмменталя (название швейцарского сыра, происходящее от названия региона Эмменталь в Швейцарии), оказывается полезной для здоровья.

В исследовании, проведенном учеными из Корейского университета в Сеуле, опубликованном в журнале Scientific Reports, выяснилось, что бактерии продлевают жизнь … ВНИМАНИЕ … круглых червей! Однако исследователи быстро заметили, что «возможно, что механизмы, обнаруженные в этом исследовании, могут применяться к другим видам, включая людей».

Команда заявила, что бактерия превращает лактат (соединение, сжигающее мышцы) в три вещества: ацетат, углекислый газ и пропионат. Известно, что ацетат и пропионат приносят пользу иммунной системе человека.

Кроме того, в швейцарском сыре присутствуют другие молочнокислые бактерии. Эти бактерии называются Weisella koreensis и Weissella cibaria – они продлевают жизнь, защищая организм от стресса и инвазии патогенов, и оказывают противовоспалительное действие.

Более того, более ранний отчет показал, что употребление выдержанных сыров, таких как Чеддер, Бри и Пармезан, может также способствовать долгожительству, увеличивая продолжительность жизни более чем на 25%, и предотвращая рак печени.

Еще одно исследование, проведенное в марте этого года, показало, что люди, которые регулярно употребляют натуральные сыры имеют нормальный вес в отличии от тех, кто этого не делает. Люди, употребляющие обезжиренные молочные продукты, имеют более высокий уровень холестерина, в отличии от людей, употребляющих обычные натуральные молочные продукты. Употребление натуральных сыров может, по-видимому, также защитить вас от сердечно-сосудистых заболеваний.

Швейцарский сыр и его отверстия

Согласно CultureCheeseMag.com, вкус швейцарского сыра можно определить по тому, насколько велики его отверстия: чем больше отверстие, тем лучше вкус.

Сыроделы могут сделать отверстия в швейцарском сыре более крупными или маленькими, на свое усмотрение, изменяя температуру молока, его кислотность и время выдержки сыра.

Американские швейцарские сыры имеют меньше воздушных карманов, что делает их вкус более мягким и кремовым. С другой стороны, европейские швейцарские сыры имеют богатый ореховый вкус.

Польза швейцарского сыра для слуха

Так что в следующий раз, когда вы захотите перекусить сыром, вы можете захотеть попробовать помимо Швейцарского сыра такие сыры, как Буррата, Стилтон, Камамбер, Фета, Халлуми или Моцарелла. Со всем удовольствием и без чувства вины, которое у многих возникает в результате потакания себе при употреблении большого количества сыра, вы, наконец, можете сказать себе: «Сладкие мечты сделаны из сыра».

Материал основан на научных данных. Цифры в скобках (1, 2, 3) являются интерактивными ссылками на рецензируемые научные статьи. Подготовлен специалистами исключительно в ознакомительных целях. Его не следует использовать в качестве руководства для лечения заболеваний, и он не может заменить профессиональную медицинскую консультацию, диагностику или лечение. В случае заболевания или каких-либо симптомов, вам не следует заниматься самолечением и всегда следует обращаться к врачу.

Эта статья была полезна для вас? Поделитесь ей с другими!

Источник

Микрофлора молочнокислых бактерии и дрожжей в 19-ти итальянских заквасок

Микрофлора молочнокислых бактерии и дрожжей 19 заквасок, используемых для традиционных/стандартных видов итальянского хлеба: взаимодействие между ингредиентами и разнообразие видов микробов

Фабио Минервини, Раффаэлла ДиКагно, Анна Латтанци, Мария Де Ангелис, Ливио Антониэлли, Джанлуиджи Кардинали, Стефан Каппелле и Марко Гоббетти

Исследование микрофлоры 19 итальянских заквасок, используемых для изготовления традиционного хлеба, позволило идентифицировать при помощи культурально-зависимого подхода 20 видов молочнокислых бактерий (LAB) и 4 вида дрожжей. Численно, наиболее частыми изолятами молочнокислых бактерий были Lactobacillus sanfranciscensis (примерно 28% от общего количества изолятов LAB), Lactobacillus plantarum (приблизительно 16%), и Lactobacillus paralimentarius (около 14%). Saccharomyces cerevisiae были обнаружены в 16 заквасках. Также были обнаружены Candida humilis, Kazachstania barnettii, и Kazachstania exigua. Как показывает анализ основных компонентов (PCA), была обнаружена корреляция между ингредиентами, особенно типом муки, микробным сообществом и биохимическими особенностями закваски. Мука из твердых сортов пшеницы характеризовалась высоким уровнем мальтозы, глюкозы, фруктозы, и свободных аминокислот (FAA), коррелирующих с единственным или доминирующим наличием облигатно гетероферментативных молочнокислых бактерий, наименьшим количеством факультативно гетероферментативных штаммов и низкой плотностью клеток дрожжей в зрелых заквасках. Это исследование при помощи системного и сравнительного подхода выделило доминирующие микрофлоры 19 итальянских заквасок, которые определили некоторые особенности традиционных видов итальянского хлеба.

Данное исследование было направлено на определение микрофлоры молочнокислых бактерий и дрожжей 19 итальянских заквасок, используемых для изготовления традиционных/стандартных видов итальянского хлеба. Доминирующие молочнокислые бактерии и дрожжи были изучены при помощи культурально-зависимых методов. Были проведены многопараметрические статистические исследования для того, чтобы найти корреляцию между ингредиентами и составом микрофлоры закваски, а также воздействием последних на биохимические характеристики закваски.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Было изучено 19 заквасок, используемых для изготовления традиционных/стандартных типов итальянского хлеба (таблица 1). Хлеб на закваске представлял несколько итальянских регионов (см. рис.S1 в дополнительных материалах). Таблица 1 обобщает ингредиенты и технологические параметры исследованных заквасок. Три партии каждой закваски брали три дня подряд из местных пекарен. Все образцы были взяты сразу в конце использования и хранились при температуре 4 °C в течение нескольких часов перед анализом. Все анализы проводились по крайней мере дважды для каждой партии закваски (всего шесть анализов для каждого типа закваски).

Определение рН, углеводов, органических кислот, этанола и свободных аминокислот.

Значения рН определялись с помощью рН-метра. Десять граммов неферментированного теста (мука и вода, выход теста [DY; (вес теста/вес муки) × 100] из 160) или зрелой закваски были гомогенизированы 90 мл буферного раствора Трис- HCl, 50 мМ (pH 8,8) и в течение 3 мин обрабатывались в гомогенизаторе BagMixer 400P (Interscience, Сен Ном, Франция). После инкубации (при температуре 25°C в течение 30 мин с помешиванием) суспензию центрифугировали (12 857 × г, 10 мин, 4 °C). Надосадочная жидкость (водорастворимый экстракт) была проанализирована на концентрацию углеводов (неферментированное тесто) и органических кислот (зрелая закваска). Они были определены жидкостной экспресс-хроматографией белков (FPLC) с использованием системы очистки ÄKTA (GE Healthcare Bio-Sciences, Уппсала, Швеция), оснащенной детектором коэффициента преломления (Perkin Elmer Corp., Уолтем, Массачусетс, США). Коэффициент ферментации (QF) был определен как молярное соотношение между D, L-молочной и уксусной кислотами. Концентрация этанола определялась ферментационным методом (EnzyPlus; BioControl Systems, Inc., США). Концентрация свободных аминокислот в водорастворимых экстрактах неферментированного теста и зрелой закваски определялись с использованием аминокислотного анализатора Biochrom 30 (Biochrom LTD, Кембриджский научный парк, Англия) (11). Смесь аминокислот с известной концентрацией (Sigma Chemical Co., Милан, Италия) была добавлена вместе с цистеиновой кислотой, метионинсульфоксидом, метионином сульфона, триптофаном и орнитином и была использована в качестве внешнего стандарта (11).

Перечисление и изоляция молочнокислых бактерий и дрожжей.

Характеристика генотипа при помощи анализа RAPD-PCR (ПЦР со случайной амплификацией полиморфной ДНК).

Геномная ДНК молочнокислых бактерий была извлечена по методу де Лос-Рейес-Гавилан и др. (14). Три олигонуклеотида: P1 (5′-GCGGCGTCGCTAATACATGC-3′), P4 (5′-CCGCAGCGTT-3′), и M13 (5′-GAGGGTGGCGGTTCT-3′), с произвольно выбранными последовательностями были использованы для биотипирования изолятов молочнокислых бактерий. Реакционная смесь и условия PCR анализа для праймеров P1 и P4 были описаны Де Ангелисом и др. (10). Условия PCR для праймера M13 соответствовали данным Сирагуза и др. (38). Произвольно амплифицированные полиморфные профили ДНК (RAPD)-PCR были получены с помощью системы документации Gel Doc 2000 и были сравнены при помощи оборудования снятия отпечатков II Informatix Software (Bio-Rad Laboratories). Сходство электрофоретических профилей оценивалось путем определения коэффициентов сходства Дайса и использованием невзвешенного попарно-группового метода с применением алгоритма средних связей (UPGMA). Поскольку профили RAPD изолятов из одной партии каждого типа закваски были подтверждены путем анализа изолятов из двух других партий, штаммы, изолированные из одной партии, были дополнительно проанализированы.

Геномная ДНК была извлечена из дрожжевых изолятов, как описано Кардинали и др. (5). Анализ RAPD-PCR с праймером (GACA)4 с рассеянными повторяющимися последовательностями (iSSR) был использован для определения дрожжей на уровне штаммов. Протокол PCR был ранее описан Андраде и др. (2), PCR был выполнен с ферментом EuroTaq (EuroClone, Милан, Италия) в одноградиентном термоциклическом аппарате (EuroClone). Сходство электрофоретических профилей оценивалось путем определения коэффициентов сходства Дайса и использования алгоритма UPGMA. Так как профили RAPD изолятов из одной партии каждого типа закваски были подтверждены путем анализа изолятов из двух других партий, штаммы, полученные из одной партии, были дополнительно проанализированы.

Генотипическая идентификация молочнокислых бактерий и дрожжей.

Идентификация штаммов проводилась с использованием двух пар праймеров (Invitrogen Life Technologies, Милан, Италия), LacbF/LacbR и LpCoF/LpCoR, для амплификации гена 16S рРНК молочнокислых бактерий (13). Праймеры, предназначенные для гена recA, также использовались для выявления видов L. plantarum, Lactobacillus pentosus и Lactobacillus paraplantarum с использованием многолокусного PCR (40). Праймеры PheS были использованы для идентификации на уровне видов в пределах родов Enterococcus, Weissella, и Leuconostoc (30). Праймеры casei/para использовались для определения видов Lactobacillus casei, Lactobacillus paracasei и Lactobacillus rhamnosus (48).

Геномная ДНК была извлечена из дрожжей методами, описанными выше. Домен D1/D2 гена 26S рРНК был амплифицирован и секвенирован в соответствии с процедурой, описанной Курцманом и Робнеттом (26). Электрофорез проводился на агарозном геле при 1,5% (вес/объем) (Gellyphor; EuroClone), ампликоны были очищены с помощью PCR ДНК с глюкозой, фруктозой и ксилитом, гелевым набором для очистки (GE Healthcare). Данные секвенирования электроферограммы были обработаны с помощью Geneious. Выравнивание последовательностей генов rRNA было выполнено с использованием метода множественного выравнивания последовательностей (17), а запросы идентификации были выполнены с помощью поисковой системы BLAST (1) в базе генетических данных (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/GenBank/).

Статистический анализ.

Данные (по крайней мере три биологические репликации) для мальтозы, глюкозы, фруктозы, свободных аминокислот, рН, органических кислот, этанола и плотности клеток были подвергнуты одностороннему дисперсионному анализу (ANOVA), а парное сравнение методов обработки было достигнуто при помощи метода Туки при P Перечисление молочнокислых бактерий и дрожжей.

Определение количества микроорганизмов посевом на чашках Петри с использованием среды с четырьмя культурами показало различные значения предполагаемых молочнокислых бактерий (рис. 1). Помимо среды культивирования и с учетом наивысшего значения для каждой закваски среднее количество микроорганизмов посевом на чашках Петри составило 9,01 log КОЕ г-1. 25-й и 75-й процентили собранных данных составили 8,75 и 9,13 log КОЕ г-1, соответственно. Это различие можно объяснить качественными и количественными различиями между средами с точки зрения питательных веществ и различных метаболических возможностей штаммов, содержащихся в каждой закваске. Почти аналогичные различия значений плотности дрожжевых клеток были обнаружены между средой агара с солодовым экстрактом и средой декстрозного агара Сабуро (рис. 2). Независимо от среды культивирования и с учетом наивысшего значения для каждой закваски, среднее значение составило 7,30 log КОЕ г-1. Соотношение между молочнокислыми бактериями и дрожжами 19 итальянских заквасок варьировалось от 100:1 до 10:1, единственными исключениями являются закваски Pane di Matera PGI (приблизительно 1000:1) и Pane Casareccio di Genzano PGI (приблизительно 1:1).

Типирование и идентификация молочнокислых бактерий.

Грамположительные, каталаза-отрицательные, неподвижные кокки и палочки, способные окислить питательную среду Мозера-Рогоза-Шарпа, бульонную питательную среду Сабуро с глюкозой, питательную среду MRS5, или бульон глюкозы-М17 (411 изолятов) были подвергнуты анализу RAPD-PCR (таблица 3). Воспроизводимость отпечатков RAPD была оценена путем сравнения продуктов PCR, полученных праймерами P1, P4, и M13 и ДНК, извлеченными из трех отдельных культур одного и того же штамма. Для этого было изучено 10 штаммов, и модели для одного и того же штамма были схожи приблизительно на 90% (данные не предоставлены) согласно анализу UPGMA. Комбинированные профили RAPD были подвергнуты кластерному анализу UPGMA (данные не предоставлены). На основе воспроизводимости анализа RAPD-PCR изоляты, показывающие значительно (P

Типирование и идентификация дрожжей.

Предварительно, 382 дрожжевых изолята (около 20 для каждой закваски) были проанализированы на способность ферментировать галактозу, сахарозу, мальтозу, раффинозу и трегалозу, а также на способность к росту при температуре 37°С. По крайней мере 6 изолятов для каждой закваски, включая все изоляты, демонстрирующие различные профили ферментации (данные не предоставлены), были генетически охарактеризованы и идентифицированы. Кластерный анализ профилей iSSR-PCR показал уровень разнообразия среди изолятов в диапазоне от 3 до 54% (данные не предоставлены). Изоляты, показывающие профили iSSR-PCR с максимальным уровнем разнообразия 10%, были сгруппированы в одном кластере. Таким образом, удалось сгруппировать 127 изолятов в 13 кластерах (I-XIII), в то время как 11 не были кластеризованы. За исключением Pane di Matera PGI, Coppia Ferrarese PGI и Pane di Cappelli, все закваски содержали изоляты, распределенные по двум или более кластерам. Штаммы были идентифицированы путем частичного анализа последовательности гена 26S рРНК (данные не предоставлены). S. cerevisiae были идентифицированы во всех заквасках, за исключением заквасок Pane di Cappelli, Pane nero di Castelvetrano, и Pagnotta del Dittaino PDO. C. humilis были идентифицированы в заквасках Pane di Terni, Pane di Cappelli и Pagnotta del Dittaino PDO. K. barnettii и K. exigua были идентифицированы в закваске Pane nero di Calstelvetrano

Статистическая корреляция между ингредиентами, технологическими параметрами, разнообразием микробных видов и биохимическими характеристиками закваски.

Источник

Weissella cibaria что это

Московский государственный медико-стоматологический университет

ФГБОУ ВО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова» Минздрава России, Москва, Россия

Кафедра эндодонтии факультета последипломного образования, Кафедра биохимии ГБОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова» Минздрава России

Кафедра биохимии ГБОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова» Минздрава России

Применение пробиотиков в лечении патологии тканей ротовой полости

Журнал: Российская стоматология. 2013;6(2): 13-19

Митронин А. В., Вавилова Т. П., Перевощикова О. А., Островская И. Г. Применение пробиотиков в лечении патологии тканей ротовой полости. Российская стоматология. 2013;6(2):13-19.
Mitronin A V, Vavilova T P, Perevoshchikova O A, Ostrovskaia I G. The application of probiotics for the treatment of pathological tissues in the oral cavity. Russian Stomatology. 2013;6(2):13-19.

Московский государственный медико-стоматологический университет

Одной из важных задач в стоматологии является лечение пациентов с использованием методов, которые могли бы применяться в практике для эффективного лечения и длительности сроков ремиссии. Поэтому в настоящем обзоре были изучены методологические подходы в лечении патологий полости рта с использованием пробиотических штаммов, в частности лактобактерий. Показано, что некоторые из них оказывают иммуномодулирующее и противовоспалительное действие, активируют фагоцитоз и синтез антител.

Московский государственный медико-стоматологический университет

ФГБОУ ВО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова» Минздрава России, Москва, Россия

Кафедра эндодонтии факультета последипломного образования, Кафедра биохимии ГБОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова» Минздрава России

Кафедра биохимии ГБОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова» Минздрава России

Следует отметить, что началом исследования была идея И.И. Мечникова по целенаправленному изменению состава микрофлоры желудочно-кишечного тракта путем энтерального введения культур молочнокислых бактерий в качестве антагонистов гнилостных микробов [15]. Эта идея нашла сторонников и стала основополагающей в стремлении радикально изменить микробиоценоз кишечника путем заселения его молочнокислыми бактериями [14]. В последующие годы продолжались разработки лекарственных препаратов на основе микроорганизмов, обладающих полезными свойствами. Ниже представлена хронология внедрения пробиотиков в медицину как лекарственных препаратов.

Этапы изучения пробиотиков

Проблемы безопасности и дозировка применения пробиотиков

— высокая жизнеспособность и толерантность к низким значениям рН и кислотам;

— не гидролизоваться пищеварительными ферментами и не всасываться в верхних отделах желудочно-кишечного тракта;

— являться селективным субстратом для одного или нескольких родов полезных бактерий;

— изменять баланс микрофлоры в сторону более благоприятного для организма-хозяина состава;

— индуцировать полезные эффекты на уровне не только желудочно-кишечного тракта, но и организма в целом.

Пробиотики поставляются на фармацевтический рынок в виде либо зрелых культур, либо препробиотических форм, выпускаются в виде порошка, желатиновых капсул, пластин, жевательной резинки или с иммобилизованными спорами Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus rhamnosus,Bifidobacterium bifidum, Streptococcus thermophilus, Saccharomyces boulardii в сочетании с олигосахаридами на низкопробном коллоидном золоте и серебре.

Механизм действия различных пробиотиков на патогенные микроорганизмы в полости рта

Исследованиями C. Cutler и R. Jotwani (2006) установлено, что в межзубных сосочках имеются зоны скопления лимфоидных клеток, которые, как предполагалось ранее, характерны только для слизистых оболочек кишечника [23]. Показано, что пробиотики способны стимулировать дендритные клетки, а те в свою очередь оказывают модулирующее действие на Т-хелперы (Th1 и Th2), отвечающие за врожденный иммунитет. Поэтому принято считать, что пробиотики поддерживают неприкосновенность врожденного иммунитета через связывание с рецепторами дендритных клеток. Пробиотики не только вызывают реакцию защитных клеток, они также не оказывают и повреждающего действия на клетки и ткани хозяина, в частности ткани пародонта. Установлено, что бактериальные клетки связываются с клетками организма-хозяина путем адгезии [27]. Подобный механизм был обнаружен у Lactobacillus casei, Lactobacillus bulgaricus, Lactobacillus rhamnosus, Lactobacillus acidophilus в коагрегации с Fusobacterium nucleatum. Выявлена сильная связующая активность бактерий Lactobacillus rhamnosus и Lactobacillus paracasei к биопленке полости рта, а бактерии рода Lactobacillus rhamnosus, Lactobacillus casei shirota, Lactobacillus casei ATCC 11578 препятствуют прилипанию патогенных бактерий к гликопротеинам слюны. Такие бактерии, как LactobacillusHetrofermentative ингибируют рост патогенов Aggregatibacter actinomycetem comitans, Porphyromonas gingivalis и Prevotella [56]. Кооперация пробиотических бактериальных колоний Fusobacterium nucleatum с Weissella ciberia борется с такими пародонтопатогенами, как Т. denticola и Porphyromonas gingivalis [36]. Подобное действие наблюдают в случае коагрегации Lactobacillus rhamnosus с Fusobacterium nucleatum [37].

В опытах in vitro показано, что Lactobacillus acidophilus и Lactobacillus casei обладают способностью ингибировать рост аэробных бактерий путем секреции молочной кислоты [60]. Weissella cibaria, как и Lactobacillus, повышают рН среды [36]. Streptococcus salivaris синтезируют защитный белок бактериоцин, который ингибирует рост бактерий, производящих серосодержащие соединения. Показано, что пластины и жевательная резинка, содержащие Streptococcus salivaris, уменьшают явления галитоза в полости рта [22]. Неприятный запах изо рта вызывают летучие сероводородные соединения, выделяемые бактериями Fusobacterium nucleatum, Porphyromonas gingivalis, Prevotella и Т. denticola. Установлено, что коагрегация Fusobacterium nucleatum с любыми пародонтопатогенами сопровождается вторичной колонизацией микробиома и способствует обильному выделению сероводородных соединений в ротовой полости [60].

Показано, что как in vivo, так и in vitro бактерии рода Weissella cibaria обладают способностью поглощать сероводородные продукты обмена. Установлено, что Weissella cibaria ингибирует рост бактерий Fusobacterium nucleatum через выделение большого количества пероксида водорода [36], при этом анаэробные бактерии ротовой полости более восприимчивы к действию пероксида водорода, нежели аэробные бактерии или факультативные анаэробы. Полученные данные явились основанием для использования Weissellacibaria в качестве пробиотика в пародонтологии.

Имеются данные, что некоторые пробиотики, а именно Lactobacillus salivaris и Lactobacillus gasseri, оказывают сильное влияние на жизнеспособность пародонтопатогенных бактерий [24]. Lactobacillus reutri способны выделять белок бактериоцин, который дает сходный с реуциклином антибиотический эффект, он тормозит рост патогенов и обладает противовоспалительным свойством [22], о чем свидетельствует уменьшение количества провоспалительных цитокинов в десневой жидкости [56]. Такими же свойствами обладает Weissellaceberia, которая синтезирует в большом количестве фермент каталазу [36].

T. Hirota и соавт. (1992) изучали биологические возможности Lactobacillus helveticus. Авторы выявили, что данный вид бактерий способен выделять пептид, оказывающий стимулирующее действие на остеобласты, и тем самым влияет на процессы остеогенеза [34].

Применение пробиотиков в стоматологической практике

В большом числе проводимых исследований убедительно доказана закономерность развития пародонтита на фоне общесистемных заболеваний, таких как атеросклероз, сахарный диабет, гиперлипидемия, патологии почек, беременность и т.д.

В связи с этим назрела критическая потребность в безопасных, естественных, без побочных эффектов лекарственных средствах, которые не будут усугублять и без того подавленную иммунную систему организма. Поэтому считается, что внедрение в клиническую практику пробиотиков является одним из прорывов в медицине в борьбе с инфекцией. Если развитие воспаления в тканях пародонта связывают с P. gingivalis, A. actinomycetemcomitans, T. forsythia, Т. denticola и Eikenella corrodens, то индикаторами здоровья тканей пародонта являются Streptococcus oralis и Streptococcus uberis [32]. Они тормозят рост болезнетворных бактерий. Считается, что при отсутствии на определенных участках пародонта Streptococcus oralis и Streptococcus uberis эти зоны становятся местом риска развития пародонтита [33], поэтому указанные штаммы бактерий стали применять в качестве пробиотиков.

В 1994 г. впервые в России был предложен способ лечения пародонтита с использованием препарата на основе ацидофильных лактобактерий (Lactobacillus acidophilus) [18]. Таблетки данного препарата (1 доза 1·10 7 КОЕ) представляют собой микробную массу живых ацидофильных лактобактерий Lactobacillus acidophilus, лиофильно высушенную и спрессованную. Позднее была внедрена методика лечения пародонтита путем применения препарата на основе бифидум бифидобактерий (Bifidobacterium bifidum) в таблетках (1 доза 1·10 7 КОЕ) с препаратом на основе ацидофильных лактобактерий [7, 9, 10]. Препарат на основе бифидум бифидобактерий состоит из живых, антагонистически активных штаммов Bifidobacterium bifidum, лиофилизированных с добавлением сахаро-желатино-молочной среды.

В 2005 г. P. Krasse и соавт. предложили включать пробиотики в состав жевательной резинки для лечения гингивита. Исследование проводили у 59 пациентов с гингивитом средней степени тяжести. Всем пациентам в течение 14 дней 2 раза в день предлагалось жевать жевательную резинку, в составе которой был включен L. reuteri в концентрации 1·10 8 КОЕ. Через 2 нед в группе обследуемых, употреблявших жевательную резинку с пробиотиком, отмечалось улучшение клинических показателей тканей пародонта [40].

В другом исследовании с участием 72 добровольцев было предложено полоскание полости рта раствором пробиотика из штаммов Weissella cibaria в объеме 15 мл [36]. Полоскание проводилось днем и вечером после чистки зубов. Отмечено, что у пациентов, которым давали пробиотик, количество зубного налета уменьшалось на 20%. Сделан вывод, что бактерии Weissella cibaria обладают способностью угнетать формирование микробных сообществ.

Свое действие пробиотики оказывают не только путем местного применения в ротовой полости, но и при приеме препаратов per os. Это было продемонстрировано в эксперименте на животных, у которых после приема пробиотиков внутрь снижалось количество Aggregatebacteractinomycetum comitans [33].

Прием таблеток, содержащих модифицированные штаммы Lactobacillus salivaris T1 2711, 5 раз в день в течение 8 нед, по данным T. Matsuoka и соавт. (2006), способствовал уменьшению кариозного процесса и кровоточивости десен. Эти признаки совпадали со снижением количества Porphyromonas gingivalis в ротовой полости [44].

D. Ricca и соавт. (2007) [52] и M. Keller и соавт. (2011) [38] изучили влияние бактерий Lactobacillus brevis и Lactobacillus reutri на активацию лейкоцитарных медиаторов воспаления. Согласно полученным результатам, снижался уровень провоспалительных цитокинов в десневой жидкости, и клинически наблюдалось исчезновение симптомов гингивита.

В 2007 г. W. Teughels и соавт. [55] провели экспериментальные исследования на 32 собаках породы гончая. Животным искусственно были созданы пародонтальные карманы, обсемененные Streptococcus sanguis KTH-4, Streptococcus salivarius TOVE и Streptococcus mitis BMS. Через 1, 2 и 4 нед результаты показали уменьшение кровоточивости десен, снижение количества аэробных бактерий Campylobacter rectus, переколонизацию пародонтальных карманов стрептококками.

Предложена схема создания временного искусственного микробиоценоза с помощью штаммов Lactobacillus acidophilus для комплексного лечения воспалительных заболеваний слизистой оболочки полости рта, вызванных патогенными и условно-патогенными микроорганизмами [3]. Разработан и защищен патентом способ доставки к тканям пародонта штаммов Lactobacillus (патент №2240771 от 29.10.03), иммобилизованных на коллагене. После лечения пациентов с пародонтитом данный способ позволил достичь срока ремиссии до 6-9 мес [5].

Лечение пародонтита средней и тяжелой степени также проводилось путем назначения пробиотика из штаммов Bacillus subtilis [4, 19]. Для лечения пациентов с хроническим пародонтитом был обоснован и разработан состав лечебного геля, включающего иммуномодуляторы с эубиотиком из штаммов Bacillus cereus I., благодаря которому в полости рта происходит элиминация энтеропатогенных бактерий штаммов E. coli, Staphylococcus aureus, бактерий рода Proteus и т.п. [12].

Г.С. Пашкова (2010) предложила проводить лечение пациентов с пародонтитом с использованием перорально препарата на основе Bifidobacterium bifidum №1 в количестве 20 доз в сутки в течение 15 дней. Автор сделала вывод, что в комплексном лечении хронического пародонтита средней степени тяжести пробиотикотерапия является эффективной и может служить альтернативой антибактериальной терапии [16].

Имеется единичная публикация об использовании пробиотиков в лечении мукозитов и периимплантитов [2]. Также опубликованы сообщения об использовании пробиотиков в качестве лечения микозов слизистой оболочки полости рта, вызванных Candida ablicans. Применение пробиотиков у пожилых пациентов позволило снизить распространение Candida spp. и улучшить функцию слюноотделения [30]. Для лечения кандида-ассоциированного пародонтита была предложена комплексная схема лечения, включающая использование антисептиков и пробиотиков основе штаммов L. acidophilus, L. plantarum, L. fermentum и Bifidobacterium bifidum №1 [20]. В таблице приведены результаты, полученные авторами, которые впервые применяли различные лекарственные формы пробиотиков в стоматологии.

Использование генетически модифицированных пробиотиков

Модифицированные пробиотики представляют собой микроорганизмы с измененными рецепторными молекулами для «ложного» распознавания их защитными клетками. Предполагается, что приобретенные свойства модифицированных пробиотиков обеспечат их доставку в биологически активной форме к желудочно-кишечному тракту и тканям пародонта [54]. Модифицированные пробиотики были успешно опробованы в лечении ВИЧ-инфекции. Улучшение свойств пробиотиков позволяет им приобрести толерантность к воздействиям температур, рН среды и кислот. Однако использование этих пробиотиков в лечении пародонтита затрудняет недостаток исследований их влияния на микрофлору кишечника и ткани пародонта.

Термин «патобиотехнология», введенный R. Sleator и C. Hill (2007), включает три основных подхода [54]:

— использование ослабленных бактериальных патогенных микроорганизмов как вакцины;

— изоляция и очистка патогенного иммуногенного белка для прямого применения;

— изменение у бактерий пробиотиков генетического кода, необходимого для противодействия патогенным микроорганизмам.

Отличие заместительной терапии патогенами заключается в том, что их не используют в качестве пищевых добавок, и они, не раздражая иммунную систему, оказывают длительное терапевтическое действие [53]. Заместительная терапия ослабленными патогенными культурами отличается от стандартной пробиотикотерапии следующим [62]:

— пробиотическая культура не применяется перорально, а вводится непосредственно в зону инфекции;

— бактерии образуют колонии только в области локализации инфекции;

— бактерии оказывают пролонгированное действие на местную микрофлору и предотвращают распространение патогенной инфекции в близлежащие ткани;

— бактерии незначительно влияют на местный иммунитет.

W. Teughels и соавт. (2007) провели исследования с неоднократным внедрением Streptococcus salivaris, Streptococcus mitis, Streptococcus sanguis на поверхность корней зубов в пародонтальных карманах, пораженных инфекцией. Результаты показали снижение количества пародонтопатогенов в области пародонтальных карманов [55].

Данная идея базируется на том, что в полости рта между индигенной микрофлорой и антимикробными факторами восстанавливается динамическое равновесие, так как развитие пародонтита, кариеса и других заболеваний полости рта, по мнению авторов, является результатом экологического дисбаланса между компонентами резидентской микрофлоры и иммунной защитой [13].

Заключение

Таким образом, пробиотики являются аналогами антибиотиков по механизму действия на вирулентную микрофлору. Основное их отличие заключается в том, что, во-первых, они не вызывают сильную реакцию со стороны иммунокомпетентных клеток, а, во-вторых, являются собственной резидентной микрофлорой организма-хозяина. Благодаря быстрому развитию технического прогресса и интеграции биофизики и молекулярной биологии в повседневную человеческую жизнь человека именно модифицированные пробиотики, возможно, окажут неоценимую помощь в лечении многих заболеваний без последствий для организма.

Данные литературы показывают, что внедрение пробиотиков в стоматологическую практику не получает еще широкого распространения ввиду отсутствия больших рандомизированных исследований в стоматологии.

Источник